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花生源性成分染料法荧光定量PCR试剂盒
花生源性成分染料法荧光定量PCR试剂盒图片
包装: 50次
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产品别名:Peanut-Derived Material SYBR PCR Kit
产品介绍

产品及特点

本试剂盒可用于检测食品或其他材料中是否有花生的成分。现代食品加工工艺极大改变了食材原有的味道、气味、色泽、纹理和质地等特性,因此传统的感官鉴别技术已经无法对食材的真伪进行准确的鉴定。同时部分食材还有致敏性,因此基于基因检测的快速灵敏的食材来源检测技术将对食品监管和安全提供重要的保障。本产品就是为满足这一需求根据 PCR原理开发的产品,它具有下列特点:

1、即开即用,用户只需要提供样品 DNA。

2、根据花生保守区域设计引物,能专一性地检测出样品中的花生成分,但不能检测其他非花生成分。

3、荧光定量 PCR检测,比常规 PCR更加灵敏。

4、快速,整个检测过程(按一个样品计)所需时间仅为 2.0小时。

5、一管式闭管操作,降低了交叉污染。

6、提供阳性标准品,便于分析实验结果。

7、对混合样品中花生成分的检测下限为  0.01%,对样品中花生成分的核酸检测下限为 0.1ng/μL。

8、本只能用于科研,足够 50次 20μL体系的荧光定量 PCR。

规格及成分

成分编号十孔盒包装(去纸托)
2×qPCR MagicMix904080.5 mL(棕色)
荧光 PCR专用模板稀释液1807011 mL(黄盖)
花生源性成分 PCR引物混合液14-510yw100 μL(白盖)
花生源性成分 PCR阳性对照(1×108拷贝/μL)14-510pc50 μL(黄盖)
DNA释放剂试用装13098250次(成分见下)
免 DNA提取试剂溶液 A成分一130982a50 μL(白盖)
免 DNA提取试剂溶液 A成分二130982100 μL(绿盖)
免 DNA提取试剂溶液 B130982c400 μL(红盖)
使用手册13-510sc1份

运输及保存

低温运输,-20℃保存,有效期一年。使用本试剂盒提供的阳性对照时,由于其浓度较高,一定要注意不要污染其他试剂和成分。**在专门的区域操作。

自备试剂

DNA模板

使用方法

一、稀释标准曲线样品(以 102-107拷贝/μL这 6个 10倍稀释度为例)。由于标准品浓度非常高,因此下列稀释操作一定要在独立的区域进行,千万不能污染样品或本试剂盒的其他成分)。为增加产品稳定性和避免扩散传染性病原,本产品不提供活体样

品做阳性对照,只提供无传染性的 DNA片段作为阳性对照。

1、标记 6个离心管,分别为 7,6,5,4,3,2。

2、用带芯枪头分别加入 45 μL荧光 PCR专用模板稀释液,**用带芯枪头,下同)。

3、在 7号管中加入 5 μL阳性对照(浓度为 1×108拷贝/μL,试剂盒提供),充分震荡 1分钟,得 1×107拷贝/μL的标准曲线样品。放冰上待用。

4、换枪头,在 6号管中加入 5 μL 1×107拷贝/μL的阳性对照(上步稀释所得),充分震荡 1分钟,得 1×106拷贝/μL的标准曲线样品。放冰上待用。

5、换枪头,在 5号管中加入 5 μL 1×106拷贝/μL的阳性对照(上步稀释所得),充分震荡 1分钟,得 1×105拷贝/μL的标准曲线样品。放冰上待用。

6、重复上面的操作直到得到 6个稀释度的标准曲线样品。放冰上待用。

二、样品 DNA的制备

7、用自选方法纯化样品的 DNA,本产品跟市场上绝大多数核酸纯化产品兼容。

8、如果有 N个样品,则需要进行 N+2个样品提取,多出的一个用作样品制备阳性对照管、另一个用作样品制备阴性对照管。如果用本试剂盒自带的DNA释放剂试用装。则按下面步骤操作:

9、配制溶液 A工作液。以配制 1mL工作液(足够 10个样品)为例:在一干净塑料管中加入 10μL溶液 A成分一,20μL溶液 A成分二和 970μL超纯水,充分混合均匀即可。溶液 A工作液可室温放置,但**在一周内用完,不要长期放置。一次检测一个样品需要 100μL溶液 A工作液,1mL工作液足够 10个样品。如果待测样品数量为其他数字,配制的溶液 A工作液的体积需要做相应的调整。

10、在标记好的 N+2个离心管中,加入 1-5mg固体样品(半粒芝麻大小)或 5μL液体样品待测样品。在样品制备阳性对照中加入 5μL阳性对照,在样品制备阴性对照中加入 5μL水。

11、在每个管中加入 100  μL溶液 A工作液,确保固体样品被溶液淹埋,如果是液体样品则震荡混匀。

12、95℃保温 10分钟。

13、待冷却到常温后加入 10μL溶液 B并混匀得 DNA释放液。每个样品得到的 DNA释放液足够进行 50-100次 PCR。

三、设置 qPCR反应(20μL体系,在样品制备室进行)

14、如果只做 1次重复,则标记 N+9个 PCR管,其中 N+2个用于上步得到的 N+2个样品,1个用于 PCR阴性对照,6个用于标准曲线样品(也充当 PCR阳性对照)。如果做 2-3次重复,则反应设置数量相应增加 2或 3倍。

15、在标记管中按下表加入各成分(本表只列出一次重复。样品管和阴性对照设置完毕后才设置阳性对照,并且阳性对照样品要等所有管子盖上盖子储存好后最后加):

成分样品管N+2个PCR阴性对照管标准曲线样品管(2-7管)
2×qPCR MagicMix(棕色管)各 10 μL10 μL各 10 μL
花生源性成分 PCR引物混合液(白盖)各 2  μL2  μL各 2  μL
自备 10×ROX (见注)各 2  μL2  μL各 2  μL
待测样品 DNA模板各 6  μL不加不加
第 7步所得标准曲线样品稀释液(2-7号)不加不加各 6μL(2号样到2号管,3号样到 3号管…)

注:仅 ABI7500、7700和 7900仪器需要使用 ROX作为对照,其他荧光 PCR仪器(如 iCycler IQ、MJ Option、MJ Chromo4、MX3000、MX4000、RotorGene 3000、RotorGene 6000和 LightCycler480)不需要使用 ROX,则用水替代。

16、盖上盖子后上机,按下面参数进行 qPCR(具体 PCR参数可以根据 qPCR仪器的不同而自行优化)。

四、qPCR反应参数

过程温度时间
预变性94℃5 min
PCR反应(35个循环)94℃0.5 min
PCR反应(35个循环)60℃0.5 min(采集 FAM通道的荧光信号)
PCR反应(35个循环)72℃0.5 min
最后延伸72℃10  min

五、数据处理

17、以阳性对照浓度的 log值为横轴,以 Ct值为纵轴,绘制标准曲线。再以待测样品的 Ct值从标准曲线上推算出样品 DNA浓度的 log值,再推算出其浓度。

六、电泳检测

18、如果有必要电泳确认,可取 10-20  μL PCR产物直接在琼脂糖凝胶上电泳产物的大小为 150bp。开盖电泳验证容易污染实验环境,强烈不建议采用此方法。

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